Может ли свободный гемоглобин быть маркером тяжести общего состояния при сепсисе?

Ю.П. Орлов1, 3, В.Т. Долгих2, А.В. Глущенко3

Кафедра анестезиологии и реаниматологии ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» МЗ РФ, Омск

2 Кафедра патофизиологии с курсом клинической патофизиологии ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» МЗ РФ, Омск

3 БУЗОО «Городская клиническая больница скорой медицинской помощи № 1», Омск

Для корреспонденции: Орлов Юрий Петрович — д-р мед. наук, профессор кафедры анестезиологии и реаниматологии ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» МЗ РФ; e-mail: orlov-up@mail.ru

Для цитирования: Орлов Ю.П., Долгих В.Т., Глущенко А.В. Может ли свободный гемоглобин быть маркером тяжести общего состояния при сепсисе? Вестник интенсивной терапии имени А.И. Салтанова. 2018;1:48–54.

DOI: 10.21320/1818-474X-2018-1-48-54


Цель исследования: определение возможности использования концентрации свободного гемоглобина как раннего прогностического маркера и предиктора летальности при сепсисе. Материалы и методы. В исследовании у 60 пациентов в возрасте 47,6 ± 7,2 года с сепсисом (30,4 ± 2,1 балла по шкале Манхейма для оценки тяжести перитонита) методами современной статистики (ROC-анализ) была проверена гипотеза, действительно ли уровень свободного гемоглобина, определяемый в 1-е сутки от момента госпитализации, может быть использован в качестве биомаркера для диагностики и прогноза тяжелого сепсиса. Информативность критерия сравнивали с информативностью прокальцитонинового теста. Результаты. Настоящее исследование показало, что концентрация свободного гемоглобина выше средней величины, измеренная в первый день течения тяжелого сепсиса, прямо связана с увеличением 30-дневной смертности, а уровень свободного гемоглобина в 1-е сутки заболевания обладает высокой чувствительностью, специфичностью и с точностью до 96,7 % может определить исход сепсиса. Заключение. Концентрация свободного гемоглобина выше средней величины, выявленная в первый день течения тяжелого сепсиса, прямо связана с увеличением 30-дневной смертности, а исследованный уровень свободного гемоглобина в 1-е сутки течения заболевания обладает высокой долей чувствительности и специфичности. Уровень свободного гемоглобина является чувствительным предиктором исхода сепсиса в 1-е сутки после начала терапии, но полученные результаты никак не исключают необходимости использования прокальцитонинового теста у септических пациентов, а напротив, диктуют целесообразность сочетания двух указанных критериев для оценки исхода тяжелого септического процесса, что требует продолжения исследований.

Ключевые слова: свободный гемоглобин, сепсис, ROC-анализ

Поступила: 15.01.2018


Литература

  1. Weis S., Carlos A.R., Moita M.R., et al. Metabolic Adaptation Establishes Disease Tolerance to Sepsis. Cell. 2017; 169(7): 1263–1275. e14. doi: 10.1016/j.cell.2017.05.031.
  2. Harbarth S., Holeckova K., Froidevaux C., et al. Geneva Sepsis Network. Diagnostic value of procalcitonin, interleukin-6, and interleukin-8 in critically ill patients admitted with suspected sepsis. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001; 164(3): 396–402.
  3. Selberg O., Hecker H., Martin M., et al. Discrimination of sepsis and systemic inflammatory response syndrome by determination of circulating plasma concentrations of procalcitonin, protein complement 3a, and interleukin-6. Crit. Care Med. 2000; 28(8): 2793–2798.
  4. Yu X., Ma X., Ai Y. Diagnostic value of serum procalcitonin for infection in the immunocompromised critically ill patients with suspected infection. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2015; 27(6): 477–483. doi: 10.3760/cma.j.issn.2095-4352.2015.06.012.
  5. Jordi Rello J., Francisco Valenzuela-Sánchez F., Ruiz-Rodriguez M., Moyano S. Sepsis: A Review of Advances in Management. Adv. Ther. 2017; 34(11): 2393–2411. doi: 10.1007/s12325-017-0622-8.
  6. Мчедлишвили Г.И. Гемореология в системе микроциркуляции: ее специфика и практическое значение. Тромбоз, гемостаз иреология. 2002; 4(12); 18–24. [Mchedlishvili G.I. Hemorheology in microcirculation system: its specificity and practical significance. Thrombosis, hemostasis and rheology. 2002; 4(12); 18–24. (In Russ)]
  7. Сторожук П.Г. Ферменты прямой и косвенной антирадикальной защиты эритроцитов и их роль в инициации процессов оксигенации гемоглобина, антибактериальной защите и делении клеток. Вестн. инт. терапии. 2000; 3: 8–13. [Storozhuk P.G. Enzymes direct and indirect antiradical protect red blood cells and their role in triggering processes of oxygenation of hemoglobin, antibacterial protection and cell division. Vestn. intensive therapy. 2000; 3: 8–13. (In Russ)]
  8. Huffman D.L., Bischof L.J., Griffitts J.S., Aroian R.V. Pore worms: using Caenorhabditis elegans to study how bacterial toxins interact with their target host. Int. J. Med. Microbiol. 2004; 293: 599–607. doi: 10.1078/1438-4221-00303.
  9. Aroian R., van der Goot F.G. Pore-forming toxins and cellular nonimmune defenses (CNIDs) Curr. Opin. Microbiol. 2007; 10: 57–61. doi: 10.1016/j.mib.2006.12.008.
  10. Gonzalez M.R., Bischofberger M., Pernot L., et al. Bacterial pore-forming toxins: the (w)hole story? Cell. Mol. Life Sci. 2008; 65: 493–507. doi: 10.1007/s00018-007-7434-y.
  11. Bull B.S., Kuhn I.N. The production of schistocytes by fibrin strands (a scanning electron microscope study). Blood. 1970; 35: 104–111.
  12. Heyes H., Köhle W., Slijepcevic B. The appearance of schistocytes in the peripheral blood in correlation to the degree of disseminated intravascular coagulation. An experimental study in rats. Haemostasis. 1976; 5: 66–73.
  13. Ehrnthaller C., Ignatius A., Gebhard F., Huber-Lang M. New insights of an old defense system: structure, function, and clinical relevance of the complement system. Mol. Med. 2011; 17: 317–329.
  14. Pöschl J.M., Leray C., Ruef P., et al. Endotoxin binding to erythrocyte membrane and erythrocyte deformability in human sepsis and in vitro. Crit. Care Med. 2003; 31: 924–928. doi: 10.1097/01.CCM.0000055366.24147.80.
  15. Lang F., Gulbins E., Lang P.A., et al. Ceramide in suicidal death of erythrocytes. Cell Physiol. Biochem. 2010; 26: 21–28. doi: 10.1159/000315102.
  16. Lang F., Qadri S.M. Mechanisms and Significance of Eryptosis, the Suicidal Death of Erythrocytes. Blood Purif. 2012; 33: 125–130. doi: 10.1159/000334163.
  17. Hod E.A., Zhang N., Sokol S.A., et al. Transfusion of red blood cells after prolonged storage produces harmful effects that are mediated by iron and inflammation. Blood. 2010; 115: 4284–4292. doi: 10.1182/blood-2009-10-245001.
  18. Dutra F.F., Bozza M.T. Heme on innate immunity and inflammation. Front. Pharmacol. 2014; 5: 115. doi: 10.3389/fphar.2014.00115.
  19. Vinchi F., Tolosano E. Therapeutic approaches to limit hemolysis-driven endothelial dysfunction: scavenging free heme to preserve vasculature homeostasis. Oxid. Med. Cell. Longev. 2013; 2013: 396527. doi: 10.1155/2013/396527.
  20. Linder M.M., Wacha H., Feldmann U., et al. The Mannheim peritonitis index. An instrument for the intraoperative prognosis of peritonitis. Chirurg. 1987; 58(2): 84–92.
  21. Singer M., Deutschman C.S., Seymour C.W., et al. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). JAMA. 2016; 315(8): 801–810. doi: 10.1001/jama.2016.0287.
  22. Vincent J.L., Ince C., Bakker J. Clinical review: Circulatory shock-an update: a tribute to Professor Max Harry Weil. Crit. Care. 2012; 16(6): 239. doi: 10.1186/cc11510.
  23. Савельев О.Н., Сухоруков В.П., Киселева А.В. Определение свободного гемоглобина плазмы крови гемоглобинцианидным методом. Лаб. дело. 1990; 10: 45–47. [Savelyev O.N., Sukhorukov V.P., Kiseleva A.V. Definition of free plasma hemoglobin gemoglobincianidnym method. Lab. case. 1990; 10: 45–47. (In Russ)]
  24. Мeisner M. PCT — procalcitonin. A new and innovative parameter in diagnosis of infections. Berlin: BRAHMS Diagnostica, 1996.
  25. Belcher J.D., Mahaseth H., Welch T.E., et al. Critical role of endothelial cell activation in hypoxia-induced vasoocclusion in transgenic sickle mice. American Journal of Physiology. 2005; 288(6): 2715–2725. doi: 10.1152/ajpheart.00986.2004.
  26. Belcher J.D., Mahaseth H., Welch T.E., et al. Heme oxygenase-1 is a modulator of inflammation and vaso-occlusion in transgenic sickle mice. Journal of Clinical Investigation. 2006; 116(3): 808–816. doi: 10.1172/JCI26857.
  27. Jeney V., Balla J., Yachie A., et al. Pro-oxidant and cytotoxic effects of circulating heme. Blood. 2002; 100(3): 879–887.
  28. Kumar S., Bandyopadhyay U. Free heme toxicity and its detoxification systems in human. Toxicology Letters. 2005; 157(3): 175–188. doi: 10.1016/j.toxlet.2005.03.004.
  29. Weinberg E.D. Iron and infection. Microbiol. Rev. 1978; 42(1): 45–66.
  30. Cassat J.E., Skaar E.P. Iron in Infection and Immunity. Cell. Host. Microbe. 2013; 13(5): 509–519. doi: 10.1016/j.chom.2013.04.010.
  31. Brauckmann S., Effenberger-Neidnicht K., de Groot H., et al. Lipopolysaccharide-induced hemolysis: Evidence for direct membrane interactions. Sci.Rep. 2016; 6: 35508. doi: 10.1038/srep35508.